2，4-D浓度/g·L-1 | 间期 | 分裂期 | 总数 | 细胞分裂指数 |
a | 1035 | 94 | 1129 | 8.3% |
b | 1075 | 92 | 1167 | 7.9% |
c | 1033 | 53 | 1085 | 4.8% |
0 | 922 | 65 | 987 | 6.6% |
组别 | 突触小泡中5-羟色胺的量 | 突触小泡蛋白分子mRNA含量 |
正常大鼠 | 正常 | 正常 |
长期情绪低落大鼠 | 正常 | 低 |
服用糖皮质激素受体拮抗剂的大鼠 | 正常 | 正常 |
下列叙述正确的是（ ）
SoBS浓度（mg/L） | 0 | 100 | 200 | 300 | 400 | 500 | 600 |
光合作用强度（CO2μmol·m2·s-1） | 18.9 | 20.9 | 20.7 | 18.7 | 17.6 | 16.5 | 15.7 |
光呼吸强度（CO2μmol·m2·s-1） | 6.4 | 6.2 | 5.8 | 5.5 | 5.2 | 4.8 | 4.3 |
注：光合作用强度用固定的CO2量表示，SoBS溶液处理对叶片呼吸作用的影响忽略不计。
实验方案：取纯合红色和纯合黄色亲本杂交得到F1 ， 让F1自交，得到F2 ， 统计F2中植物的表现型及比例。回答下列问题：
①若两对基因位于两对同源染色体上，则F2中的表现型及比例为。让F2中白色个体随机授粉，F3白色个体中纯合子占。
②若两对基因位于一对同源染色体上，请写出F1自交产生F2的遗传图解。
Ⅰ.培养基的配制与灭菌：按照培养基的成分计算、称量、溶化、、灭菌。
Ⅱ.菌悬液制备：用从斜面培养基中取出菌种，接种到LB液体培养基中，在37℃摇床上振荡培养。
Ⅲ.诱变处理：取3mL菌悬液加入到培养皿内，轻轻振荡，目的是。平放在灭菌的超净工作台上，打开皿盖，开启超净台中的用于诱变处理。
Ⅳ.筛选营养缺陷型菌株：用移液器取诱变后的菌液适量，涂布接种在LB完全固体培养基37℃下培养24h。用无菌绒布“影印”完全培养基上的菌落接种到基本培养基上，37℃下培养24h。的菌落即为营养缺陷型菌株(如图所示)。采用影印法培养的优点是。
Ⅴ.营养缺陷型菌株的鉴定：为鉴定某营养缺陷型菌的具体类型，将该菌种涂布接种于以下5组添加了不同类型氨基酸的基本培养基中，观察其生长状况。结果该菌株只能在A、C两组培养基中生长，则该菌株为营养缺陷型。
组别 | 氨基酸组合 | ||||
A | 组氨酸 | 苏氨酸 | 谷氨酸 | 天冬氨酸 | 亮氨酸 |
B | 精氨酸 | 苏氨酸 | 赖氨酸 | 甲硫氨酸 | 苯丙氨酸 |
C | 酪氨酸 | 谷氨酸 | 赖氨酸 | 色氨酸 | 丙氨酸 |
D | 甘氨酸 | 天冬氨酸 | 甲硫氨酸 | 色氨酸 | 丝氨酸 |
E | 半胱氨酸 | 亮氨酸 | 苯丙氨酸 | 丙氨酸 | 丝氨酸 |
Ⅵ.可利用基因编辑技术对猪的H基因改造为人的H基因。基因编辑技术常使用CRISPR/Cas9系统，需要对特定的DNA序列识别并切割。CRISPR/Cas9系统的功能类似于基因工程工具酶中的，可催化的断裂。
Ⅶ.获得目的基因后，用法将目的基因导入猪的胚胎成纤维细胞。经核移植技术获得的重组细胞经过、、将胚胎移植至代孕母猪体内，产下F0。此过程中选用胚胎成纤维细胞而不是体细胞的优点是。
Ⅷ.将F0与野生型杂交后筛选得到F1 ， F1再与野生型杂交后筛选得到F2。由图可见，在上述繁殖过程中，CAG的重复次数会逐渐。在上述F0、F1、F2中最适合作为亨廷顿舞蹈症模型猪的是F2 ， 原因是。
②在验证物质A有抑制肿瘤生长作用的实验中，以肿瘤的体积为观察指标，每3天观测一次，连续观测3次。研究人员先切除小鼠的胸腺，并用大剂量X射线照射去胸腺的小鼠，其目的是，获得的小鼠为无胸腺裸鼠，简称裸鼠。给裸鼠输入等量的MCF7细胞，待长出肿瘤后，选取的裸鼠均分为两组，进行实验。
①病原体侵入人体后，需经细胞处理呈递出抗原。单抗比一般血清中的抗体优越的多，原因是一般血清中的抗体。
②为研究两种单抗（分别称为A、B）与抗原甲结合的位点是否相同，可按图2所示简要流程进行实验，图2为实验组。图2中检测指标为。实验还需设置对照组，请将对照组应使用的抗体填入表I、II处（填“A”或“B”或“无关抗体”），完成实验方案。
抗体 组别 | 未标记抗体 | 荧光标记抗体 |
对照组I | I | II |
对照组2 | B | B |
